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流式細胞儀的操作步驟和使用注意事項

更新時(shí)間:2022-12-10

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   流式細胞儀是儀器設備中的生物器械,屬于分子生物范疇。 流式細胞儀已廣泛應用于:免疫學(xué)、生物化學(xué)、生物學(xué)、腫瘤學(xué)以及血液學(xué)等方面的研究和臨床常規工作。具體的說(shuō),(1)免疫學(xué)用于:研究細胞周期或DNA倍體與細胞表面受體及抗原表達的關(guān)系; 進(jìn)行免疫活性細胞的分型與純化; 分析淋巴細胞亞群與疾病的關(guān)系; 免疫缺陷病如艾滋病的診斷; 器官移植后的免疫學(xué)監測等。(2)生物學(xué)中的。
  流式細胞儀是以流式細胞術(shù)為核心技術(shù),集光學(xué)、電子學(xué)、流體力學(xué)、細胞化學(xué)、生物學(xué)、免疫學(xué)以及激光和計算機等多門(mén)學(xué)科和技術(shù)于一體的先進(jìn)科學(xué)技術(shù)設備。是現代科學(xué)研究中的先進(jìn)儀器之一,被譽(yù)為實(shí)驗室的”CT”。流式細胞儀主要由液流系統、光路系統、檢測分析系統三部分組成。部分儀器在電子系統中具有分選功能,通過(guò)對粒子進(jìn)行充電和偏轉,達到對細胞的分選并分析的目的。
  操作步驟:
  1.  單細胞懸液的制備:將1x105~1x107的細胞放入1.5 m l離心管中3000 r/min 離心5分鐘,棄上清;加入FACS緩沖液100 ul 懸浮細胞。
  2.  封閉細胞表面Fc受體:在步驟1中加入Fc受體抗體0.5 ul(0.5 mg/ml),水浴3分鐘。
  3.  細胞與熒光抗體結合:在步驟2中加入熒光抗體1 ul(0.5 mg/ml),水浴30分鐘。
  4.  洗細胞去除游離的熒光抗體:在步驟3中加入FACS緩沖液350 ul,輕輕混勻,3000 r/min,離心5分鐘,棄上清,重復步驟(4)2次。
  5.  上樣前處理:取100 ul 儀器緩沖液加入步驟(4)獲得的細胞沉淀中,輕輕混勻懸浮細胞,將細胞懸液移入FACS專(zhuān)用管中,準備進(jìn)行儀器檢測和分析。
  注意事項
  1.  減少非特異熒光染色
 ?。?)細胞的活性和狀態(tài):流式細胞儀不但可探測細胞表面的熒光,也可探測細胞內的熒光。因此,如果要檢測細胞表面的分子,一定要保證細胞的活性,還應盡可能保持細胞靜止,通常在4度進(jìn)行操作。否則,熒光抗體進(jìn)入死細胞內,會(huì )產(chǎn)生非特異結果。
 ?。?)封閉抗體的應用是bi不可少的,因為大多數的免疫細胞表面都表達有Fc-R。細胞與抗體相互作用后,一定要用FACS緩沖液洗2~3次,以除去游離的抗體。
  2.  單染色時(shí)以FCS常用,FITC標記抗體熒光比較穩定而且價(jià)格合適。
  3.  如果同時(shí)要檢測兩種以上的分子,一定要選擇不同波長(cháng)的熒光所標記的抗體。
  流式細胞儀是一種能夠探測和計數以單細胞液體流形式穿過(guò)激光束的細胞檢測裝置,由于在檢測中使用的細胞標志示蹤物質(zhì)為熒光標記物,因此,用來(lái)分離、鑒定細胞的流式細胞儀有被稱(chēng)為熒光激活細胞分類(lèi)儀,是分離和鑒定細胞群及亞群的一種強而有力的應用工具。
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