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胰酶消化法培養原代細胞實(shí)驗原文鏈接:http://www.stemcell.so/article-837.html
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實(shí)驗方法原理
將動(dòng)物機體的各種組織從機體中取出,經(jīng)各種酶(常用胰蛋白酶)、螯合劑(常用 EDTA)或機械方法處理,分散成單細胞,置合適的培養基中培養,使細胞得以生存、生長(cháng)和繁殖,這一過(guò)程稱(chēng)原代培養。因此,較為嚴格地說(shuō)是指成功傳代之前 的培養,此時(shí)的細胞保持原有細胞的基本性質(zhì),如果是正常細胞,仍然保留二倍體數。但實(shí)際上,通常把*代至第十代以?xún)鹊呐囵B細胞統稱(chēng)為原代細胞培養。zui常 用的原代培養有組織塊培養和分散細胞培養。
實(shí)驗材料
胎鼠新生鼠
試劑、試劑盒
1640培養基牛血清胰酶Hank’s液碘酒
儀器、耗材
培養箱 培養瓶 青霉素瓶 小玻璃漏斗 平皿 吸管 移液管 紗布 手術(shù)器械 血球計數板 離心機 水浴箱
實(shí)驗步驟
一、實(shí)驗材料準備
1. Hank’s液配方:KH2PO4 0.06 g,Nacl 8.0 g,NaHCO3 0.35 g,KCl 0.4 g,葡萄糖1.0 g,Na2HPO4·H2O 0.06 g,加H2O至 1 000 ml。Hank’s液可以高壓滅菌。4℃下保存。
二、具體操作
1. 將孕鼠或新生小鼠拉頸椎致死,置75%酒精泡2-3秒鐘(時(shí)間不能過(guò)長(cháng)、以免酒精從口和肛門(mén)浸入體內)再用碘酒消毒腹部,取胎鼠帶入超凈臺內(或將新生小鼠在超凈臺內)解剖取肝臟,置平皿中。
2. 用Hank’s液洗滌三次,并剔除脂肪,結締組織,血液等雜物。
3. 用手術(shù)剪將肝臟剪成小塊(1 mm2),再用Hank’s液洗三次,轉移至小青霉素瓶中。
4. 視組織塊量加入5-6倍的0.25%胰酶液,37℃中消化20-40分鐘,每隔5分鐘振蕩一次,或用吸管吹打一次,使細胞分離。
5. 加入3-5 ml培養液以終止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制劑)。
6. 靜置5-10分鐘,使未分散的組織塊下沉,取懸液加入到離心管中。
7. 1 000 rpm,離心10分鐘,棄上清液。
8. 加入Hank’s液5 ml,沖散細胞,再離心一次,棄上清液。
9. 加入培養液1-2 ml(視細胞量),血球計數板計數。
10. 將細胞調整到5×105/ml左右,轉移至25 ml細胞培養瓶中,37℃下培養。
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